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    流式細(xì)胞術(shù)實(shí)驗(yàn)常見(jiàn)問(wèn)題分析

    發(fā)布時(shí)間: 2024-04-22  點(diǎn)擊次數(shù): 500次

    流式細(xì)胞技術(shù)(Flow Cytometry,簡(jiǎn)稱(chēng)FCM)是一種高效的方法,用于分析和收集細(xì)胞懸液中的單個(gè)細(xì)胞。FCM的優(yōu)勢(shì)在于其速度快、結(jié)果客觀,并且具有重要的統(tǒng)計(jì)意義。它能夠處理復(fù)雜的樣本,同時(shí)收集多個(gè)參數(shù),其可靠性和重復(fù)性都非常出色。


    今天我將總結(jié)并分享一系列關(guān)于流式細(xì)胞技術(shù)的常見(jiàn)問(wèn)題及其分析。對(duì)于流式細(xì)胞術(shù)的原理和步驟不甚清晰的同學(xué),建議先閱讀本公眾號(hào)以往的文章,了解背景知識(shí)。


    1.熒光抗體染色無(wú)信號(hào)或信號(hào)弱


    (1)加入的抗體量不足:這是普通的一種情況,只需要摸索實(shí)驗(yàn)條件,適當(dāng)增加抗體的量或濃度。

    (2)細(xì)胞數(shù)量過(guò)多:熒光弱可能是因?yàn)榧?xì)胞相對(duì)于染料太多了,應(yīng)該正確地調(diào)整細(xì)胞的密度,一般低于1*10^7個(gè)/ml

    (3)抗體儲(chǔ)存方式不對(duì):抗體沒(méi)有保存在4℃并且避光,比如冷凍(-20℃甚至更低)保存可能會(huì)導(dǎo)致熒光抗體的沉降,顯著影響抗體染色效果。

    (4)用于細(xì)胞內(nèi)染色的熒光染料分子量太大:染料體積太大,因此其進(jìn)入細(xì)胞的可能性降低。

    (5)一抗和二抗不相容:使用的二抗應(yīng)與一抗的物種來(lái)源相同(例如,一抗為兔源,則應(yīng)該使用抗兔源二抗)。

    (6)儀器問(wèn)題:(流式細(xì)胞儀的光學(xué)系統(tǒng)由三個(gè)部分組成:激光器、濾光片和檢測(cè)器。激光器的數(shù)量、檢測(cè)器的數(shù)量以及濾光器的類(lèi)型共同決定儀器的檢測(cè)范圍)。這三部分之一出現(xiàn)問(wèn)題的時(shí)候,就無(wú)法檢測(cè)到熒光信號(hào)。

    濾光片選擇有誤:不同熒光有不同的發(fā)射譜,為了檢測(cè)到信號(hào),需要搭配能夠捕捉到該波長(zhǎng)信號(hào)的濾光片(濾光片可以將熒光激發(fā)后產(chǎn)生的相應(yīng)波長(zhǎng)的光子引導(dǎo)至特定的傳感器上);激光器沒(méi)有對(duì)齊:必要時(shí)通過(guò)運(yùn)行液流檢查微珠來(lái)調(diào)整路線。

    (7)靶蛋白不存在/表達(dá)水平低:巧婦難為無(wú)米之炊,要給靶蛋白染色,至少要確保組織/細(xì)胞類(lèi)型表達(dá)的靶蛋白至少處于足夠檢測(cè)的量。

    (8)靶蛋白存在于細(xì)胞表面還是細(xì)胞內(nèi):有些抗原表達(dá)在細(xì)胞表面,有些表達(dá)在胞漿、細(xì)胞器內(nèi)、胞核,甚至有些在所有部位都表達(dá)。比如對(duì)細(xì)胞系進(jìn)行染色時(shí),胰蛋白酶通常可以引起細(xì)胞表面蛋白的內(nèi)化,因此需要確定好抗原的表達(dá)位置,選擇合適的染色方法。

    (9)靶蛋白的表達(dá)需要經(jīng)過(guò)誘導(dǎo):有些抗原在活化后發(fā)生下調(diào),而有些蛋白則需要被誘導(dǎo)才能表達(dá)。因此要選擇合適的方法激活細(xì)胞,使其充分表達(dá)靶蛋白,同時(shí)要加蛋白轉(zhuǎn)運(yùn)抑制劑使其留在胞內(nèi),然后固定破膜,染相應(yīng)抗體。

    (10)靶蛋白是分泌蛋白分泌蛋白的檢測(cè)十分困難,因?yàn)榈鞍讜?huì)在檢測(cè)前從細(xì)胞中釋放出來(lái)且可能快速降解。高爾基體阻斷劑(如布雷非德菌素A)可用于抑制表達(dá)蛋白的分泌,使其仍保留在高爾基體中。然后再用細(xì)胞內(nèi)染色法檢測(cè)靶標(biāo)蛋白。

    (11)補(bǔ)償過(guò)高:使用陽(yáng)性對(duì)照再次正確設(shè)置流式細(xì)胞儀

    2.熒光強(qiáng)度過(guò)高

    (1)抗體濃度過(guò)高:這將會(huì)導(dǎo)致非常明顯的非特異性結(jié)合或者是特異性結(jié)合的高強(qiáng)度熒光。

    (2)過(guò)多抗體被捕獲于細(xì)胞內(nèi):在胞內(nèi)染色的時(shí)候,較大的熒光分子被困在細(xì)胞內(nèi)部。

    (3)封閉不足:封閉這個(gè)操作可以有效地減少染料和蛋白的非特異性結(jié)合。

    3.在應(yīng)該只有一個(gè)細(xì)胞群的情況下觀察到多個(gè)細(xì)胞群

    (1)樣品本身含有多個(gè)表達(dá)靶蛋白的細(xì)胞群:有可能是因?yàn)楸磉_(dá)該靶蛋白的細(xì)胞群不止一個(gè),但操作過(guò)程中沒(méi)有做好分離。

    (2)出現(xiàn)細(xì)胞雙峰:出現(xiàn)了第一群兩倍熒光強(qiáng)度的第二群細(xì)胞。可能是細(xì)胞分離不充分甚至是細(xì)胞團(tuán)塊沒(méi)有過(guò)濾掉,導(dǎo)致檢測(cè)時(shí)多個(gè)細(xì)胞聚集在一起。

    4.儀器檢測(cè)到的粒子太少

    (這里的粒子指的是上樣時(shí)儀器檢測(cè)到的微粒,有可能是細(xì)胞,也有可能是破碎細(xì)胞產(chǎn)生的細(xì)胞器,或者沒(méi)有充分分離而形成的細(xì)胞團(tuán)塊)

    (1)細(xì)胞密度低:即每毫升樣品的細(xì)胞數(shù)目太少,自然檢測(cè)的效率就不高。

    (2)檢測(cè)的參數(shù)當(dāng)中電壓設(shè)置得太低。

    (3)細(xì)胞聚集,堵塞管道:多個(gè)細(xì)胞聚集成團(tuán)快,卻被檢測(cè)成一個(gè)粒子,且該粒子大小是異常的,在后續(xù)圈門(mén)也有可能被廢棄。染色前要輕輕吹打幾次,確保形成單細(xì)胞懸液,上樣之前最好再次混勻。另外,染細(xì)胞死活對(duì)于這一問(wèn)題也有幫助,因?yàn)樗兰?xì)胞會(huì)釋放它的DNA,而DNA非常粘稠,最后會(huì)導(dǎo)致細(xì)胞成團(tuán)。

    5.背景高或陽(yáng)性細(xì)胞百分比高

    (1)抗體過(guò)量。

    (2)補(bǔ)償過(guò)低:流式細(xì)胞分析中經(jīng)常要用到2種以上的熒光標(biāo)記抗體進(jìn)行染色,而目前所使用的多種熒光染料發(fā)射譜間有一定重疊,也就是說(shuō),熒光A的激發(fā)光會(huì)有一部分被熒光B的通道檢測(cè)到,這就是熒光溢漏。例如,當(dāng)我們?cè)谶M(jìn)行單色流式實(shí)驗(yàn)的時(shí)候,可以在其他通道砍到熒光信號(hào),這些熒光信號(hào)就是溢漏出來(lái)的熒光,而糾正熒光溢漏的過(guò)程就是“補(bǔ)償"。補(bǔ)償太低,就無(wú)法正確地糾正這些溢漏的熒光信號(hào),使背景變高。

    6.側(cè)向散射(反映細(xì)胞的顆粒度)背景高

    (1)細(xì)胞裂解過(guò)度:制備樣品時(shí)離心或振蕩過(guò)度,使細(xì)胞破碎產(chǎn)生細(xì)胞碎片。

    (2)細(xì)菌污染:從其它微小顆粒和背景信號(hào)中區(qū)分細(xì)菌群落的方法是用熒光染料標(biāo)記細(xì)菌,然后使用該熒光來(lái)識(shí)別目標(biāo)群落。

    (3)死細(xì)胞的處理:流式細(xì)胞術(shù)非常容易被死細(xì)胞干擾,因?yàn)樗兰?xì)胞比活細(xì)胞更容易攝取抗體和探針,導(dǎo)致明顯的非特異性染色。且死細(xì)胞的自發(fā)熒光往往特別強(qiáng),這樣背景熒光變強(qiáng),就無(wú)法觀察到一些靶蛋白的弱陽(yáng)性表達(dá)了。

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