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從骨骼肌分離和培養(yǎng)單肌纖維的方法步驟
發(fā)布時間: 2021-11-15 點擊次數(shù): 1781次材料與儀器
Matrigel DMEM L-谷氨酰胺 Ⅰ型膠原蛋白
青霉素和鏈霉素混合液 雞胚提取液 馬血清 胎牛血清 接種培養(yǎng)液 增殖培養(yǎng)液
Petri培養(yǎng)皿 改良Pasteur吸管 24孔培養(yǎng)板 鉆石筆 透照立體解剖顯微鏡步驟
1. 處死動物后立即切除肌肉。注意夾持肌腱,以減少對肌纖維的損傷。
2. 將肌肉放入 0.2 % Ⅰ型膠原蛋白酶液(W / V,用 DMEM 配制),在 35°C 條件下用搖動水浴箱孵育 60~90 min。較大肌肉需要較長消化時間,一般情況下取自 6~8 周大鼠的趾長伸肌需消化 60 min 。
3. 準備盛肌纖維的 Petri 培養(yǎng)皿,即用馬血清浸洗培養(yǎng)皿,以免肌纖維黏附于培養(yǎng)皿底壁上。然后,加入 20 ml DMEM。
4. 消化后將肌肉移入盛有 DMEM 的 Petri 培養(yǎng)皿。
5. 在透照立體解剖顯微鏡下,用改良 Pasteur 吸管(將 Pasteur 吸管割斷,用鉆石筆將開口弄大。然后,用火使鋸齒狀邊緣變光滑,以免損傷肌纖維)研磨肌肉,使單肌纖維分散。
用 10 % 馬血清(用 DMEM 配制)浸蘸吸管,以免肌纖維黏附吸管。
6. 肌纖維被分散時,肌肉的直徑變小。逐漸用口徑小的 Pasteur 吸管。
7. 當分離 20~30 條肌纖維時,將肌肉移入另一 Petri 培養(yǎng)皿,繼續(xù)分離,直至分離得到足夠的肌纖維。
8. 較大肌肉需要第二次消化,以分散位于中央處的肌纖維。表淺的肌纖維被分離后,將剩余的肌肉放人膠原蛋白酶液,進一步消化。
9. 將肌纖維放入涂有 Matrigel (1 mg/ml,用 DMEM 配制)的培養(yǎng)皿。
(a)將單肌纖維放于培養(yǎng)皿中央,讓其貼于 Matrigel。為了培養(yǎng)純單肌纖維,只放入未損傷的肌纖維,除去較皺縮部分。這些部分可能有污染的附著細胞,多為微血管段;
(b)慢慢加入接種培養(yǎng)液(DMEM,添加 10% 馬血清、0.5% 雞胚提取液、4 mmol/L L-谷氨酰胺、100 U/ml 青霉素和 100 μg/ml 鏈霉素),注意勿移動接種的肌纖維。
10. 將培養(yǎng)皿放入培養(yǎng)箱,在 37°C 和 5 % CO2 條件下培養(yǎng)。
增殖
培養(yǎng) 12~24 h 后,衛(wèi)星細胞開始從肌纖維遷出。至 3~4 天,每條肌纖維周圍有 50~300 個衛(wèi)星細胞。確切細胞數(shù)取決于肌纖維來源的肌肉和小鼠周齡等多種因素 [ Bockhold et al.,1998 ] 。
11. 許多衛(wèi)星細胞從肌纖維遷出時,用 Pasteur 吸管將肌纖維吸出。應(yīng)在火焰上將吸管尖部拉細。
12. 繼續(xù)培養(yǎng)剩余的細胞。
13. 如果需要,可傳代培養(yǎng),用增殖培養(yǎng)液(DMEM,添加 20% FBS、10% 馬血清、1% 雞胚提取液、4 mmol/L L-谷氨酰胺、100 U/ml 青霉素和 100 μg/ml 鏈霉素)接種細胞。